Experimente und Nachweisreaktionen

• allgemeine Nachweisreaktionen
• Nachweis von Eiweiß
• Nachweise für den enzymatischen Abbau
• Nachweise für Photosynthese
• Bodeneigenschaften
  
• Experimente
  

• Blatt
• Schere
• Mörser
• Filterpapier
• Gefäß

1. grünes Blatt kleinschneiden
2. Quarzsand dazugeben (oder erhitzten Seesand)
3. Etanol dazugeben
4. weiter zerkleinern
5. filtern
6. Filterpapierstreifen hereinstellen (ca. 3min)
7. trocknen lassen
   

• Grün --> Gelb --> leicht Rot
• Kapilarwirkung des Papieres:
• Durch unterschiedliche Eigenschaften der Farbbestandteile des Chlorophyls werden die einzelnen Farben unterschiedlich weit transportiert und werden getrennt sichtbar
• gelb = Caratonoide
• grün = Chlorphyl
• rot = Xantophyle

• Fehling I (CuSO₄)
• Fehling II (organisches Tartat)
• Reagenzglas
• Brenner
• Reagenzglashalter
  

1. Substanz lösen
2. Fehling I + II zu gleichen Teilen zugeben
3. leicht erwärmen (Vorsicht Siedeverzug)
   

• Ziegelrote Färbung wenn Zucker vorhanden
• nicht mehr blau oder grün
• grün => kann Hinweis auf Sacherose sein
  

• Jod-Kalilium- Jodidlösung
  

1. auftropfen der farblosen Flüssigkeit
   

• Blau-Schwarzfärbung
  

• Chlor-Zink Lösung
  

1. auftropfen
   

• tiefrote Färbung
  

• Phloroglyzin- lösung
  

1. auftropfen
2. 5min warten
   

• purpurrote Färbung
  

• Fett
• Filterpapier
  

1. auftragen auf Filterpapier
2. trocknen
   

• bleibt ein Fleck
  

• Salpeter
• Eiweißlösung oder gekochtes Ei
  

1. wenige Tropfen Salpeter auftropfen
   

• gelbe Färbung
  

• 2ml Eiweißlösung
• 2ml Natrium- hydroxidlösung
• Kupfersulfatlösung
  

1. Eiweißlösung und Natriumhydroxydlösung vermischen
2. wenig Tropfen Kupfersulfat dazugeben
   

• violete Färbung
  

• Reagenzglas
• Reagenzglashalter
• Brenner
  

1. Lösung über 60°C erhitzen
   

• Eiweiß wird fest
• => denaturiert
  

• Fehling I
• Fehling II
• Jod-Kaliumjodid- Lösung
• α - Amylase
• Mundspeichel
• erwärmte Schwefelsäure
• 4 Reagenzgläser
  

1. Reagenzglas
1. Stärke
2. Wasser
3. Iod-Kaliumjodidlösung
2. Reagenzglas
1. Stärke
2. Wasser
3. Fehling I + II
3. Reagenzglas
1. Stärke
2. Wasser
3. α - Amylase
4. an warmen Ort 10min stehen lassen
5. dann  Iod-Kaliumjodidlösung
4. Reagenzglas
1. Stärke
2. Wasser
3. α - Amylase
4. an warmen Ort 10min stehen lassen
5. dann Fehling I + II
   

• 1. Reagenzglas
• blau-schwarze Färbung
• =>Stärke enthalten
  
• 2. Reagenzglas
• grüne Färbung
• =>Stärke enthalten
• 3. Reagenzglas
• geringere  blau-schwarz Färbung
• => Stärke abgebaut
• 4. Reagenzglas
• Ziegelrote Färbung
• => Stärke abgebaut
  

• H₂O₂ Wasserstoff- peroxid
• Katalase
• Kartoffelpresssaft
• Apfelstückchen
  

• Enzym + H₂O₂
  

• Bläschenbildung
• 2H₂O₂ <=> 2H₂O O₂
  

• Katalase
• Schwehrmetalllösung
• Wasserstoffperoxid
• 2 Reagenzgläser
  

1. Katalase erwärmen
2. Wasserstoffperoxid hinzufügen

1. Zur Katalase Schwehrmetalllösung hinzufügen
2. Wassestoffperoxid hinzufügen
   

• keine Bläschenbildung in beiden Proben
• => Enzyme sind denaturiert
  

• 3.5%ige Milch
• Phenolphthalein Indikator
• farblos
• bei pH8 pink
• Natriumcarbonatlösung
• zur basischen Reaktion der Milch
• Lipase
• 2 Reagenzgläser
  

1. Milch, Phenolphthalein und Natriumcarbonat in beide Reagenzgläser geben
2. in das 2. Reagenzglas zusätzlich Lipase geben
3. 10min an warmen ort stehen lassen

• 1. Reagenzglas
• pinkfärbung
• 2. Reagenzglas
• entfärbung der Lösung
• entstehende Fettsäuren neutralisieren => basische Lösung
• pH Wert fällt
  

• Öl
• Gallsaft
• 2 Reagenzgläser
  

1. Öl in beide Reagenzgläser
2. Gallsaft ins zweite Reagenzglas
   

Stärkenachweis im Laubblatt

• Blatt
• kochendes Wasser
• Alkohol
• Iod-Kaliumjodidlösung

1. Blatt vorbrühen
2. in heißen Alkohol spühlen
3. Jod-Probe
   

• Blatt färbt sich dunkel => Stärke enthalten

Nachweis von Kohlenstoff im Laubblatt

• Laubblatt
• Brenner
• Reagenzglas
• Reagenzglashalter
  

1. Blatt in Reagenzglas
2. Erhitzen
   

• Blatt wird Schwarz => Kohlenstoff enthalten
  

Nachweis von Chlorophyll in roten Blättern

• rotes Laubblatt
• Alkohol
• Feuerzeugbenzin
  

1. Laubblatt mit Alkohol entfärben
2. Feuerzeugbenzin zugeben
   

• roter Farbstoff trennt sich vom grünen Chlorophyll
  

Bodenart

• Bodneprobe
• Wasser
  

1. Bodenprobe anfeuchten
2. kneten
   

• klebrig/ formbar => Ton
• samtig/ mehlig => Schluff
• nict haftend => Sand
  

Bodenreaktion

• 50g Bodenprobe
• 10ml destiliertes Wasser
• Unitestpapier
  

1. Boden mit destilierte Wasser aufgeschwemt
2. filltriert
3. mit Uniteststreifen getestet
   

• je nach Färbung = basisch, neutral, sauer
  

Kalkgehalt

• Bodenprobe
• verdünnt Salzsäure
• Uhrglsaschale
  

1. Boden auf Uhrglasschale
2. Salzsäure aufträufeln
   

• kein Aufbrausen = <0,5% Kalk
• schwaches, kurzes Aufbrausen = 0,2-2% Kalk
• kurzes, starkes Aufbrausen = 3-4% Kalk
• starkes, anhaltendes Aufbrausen = über 5% Kalk
  

Wassergehalt

• Bodenprobe
• Porzelanschale
• Waage
• Trockenschrank
  

1. Bodenprobe wiegen
2. auf Porzelanschale geben
3. im Trockenschrank 24h trocknen bei 105°
4. 4. nochmals wiegen
   

• Differenz ergibt absuluten Wassergehalt
• Prozentualen Wassergehalt berechnen
• Sandboden max 19%
• humusreicher Sandboden max 53%
• Tonboden max 81%
• Moorboden max 126%
  

Ionengehalt

• Bodenprobe
• destiliertes Wasser
• Ionenstäbchen
• Teststäbchen
  

1. Boden mit destilierte Wasser aufgeschwemt
2. filltriert
3. mit Ionenstäbchen getestet
   

• Beweis für Vorhandensein oder Abwesenheit von Ionen
  

Ausgleich von Konzentartionsgefällen

• Mikroskop
• Objektträger
• Rasiermesser
• Pinsette
• Wasser
• Salzlösung
• destiliertes Wasser
  
• Blatt
• Färbemittel
  

1. Abzugspräperat herstellen
2. Präperat einfärben
   
3. Zuckerlösung/ Salzlösung zugeben (hypertone Lösung)
   
4. Beobachten
5. Destiliertes Wasser zugeben (hypotone Lösung)
6. Beobachten
   

• hypertone Lösung
• eingefärbter Bereich der Zelle wird kleiner
• => Wasser wird aus der Zelle gepumpt um das Konzentationsgefälle zu verringern
• hypotone Lösung
• eingefärbter Bereich nimmt wieder zu
• bis zum platzen der Zelle
• => Wasser wird in die Zelle gepumt um das Konzentrationsgefälle zu verringern
  

• Zahnstocher
• Objektträger Deckgläschen
• Färbemittel (Fuchsinlösung oder Mytelenblau-Lösung)
• Mikroskop
  

1. Entnahme der Mundschleimhautzellen
2. Aufbringen der Schleimhautzellen auf einen Objektträger
3. Trocknen des Abstrichs
   
4. Färben des Präperates
5. Abspülen der Färbelösung
6. Aufbringen eines Deckglases
7. Betrachten des Präperates
   

• Bei weiblichen Zellen ist im Zellkern das BAR-Körperchen zu erkennen